Пример готовой дипломной работы по предмету: Ветеринария
Содержание
Обзор литературы.
Антигенная структура эритроцитов человека и животных
В данное время Международным обществом переливания крови (ISBT) изучены 33 системы групп крови, описано более
35. антигенов эритроцитов (Logdberg L. et al., 2011).
В настоящее время допустимо, что общее число систем групп крови измеряется сотнями. Эритроциты человека считаются носителями множества антигенов, обладающих иммунной специфичностью и вызывающих появление иммунных антител – агглютининов. Мембрана эритроцитов, как и другие клетки, имеет гликопротеины – белки с выступающими «хвостиками» углеводов, характерными для разных клеточных структур. Благодаря этому происходит распознавание одних клеток другими. Гликопротеины называют антигенами (агглютиногенами) из-за их способности вызывать против себя появление специфических антител.
Наиболее распространенная функционально сложная система крови человека – это система АВO. Выдающийся труд австрийского врача Карла Ландштайнера о специфичности серологических реакций в 1900– 1901 годах привел к открытию А, В, O групп крови. В 1902 году А. Декастело и А. Штурли описали четвертую группу крови по системе АВO – АВ (IV).
В связи с присутствием или отсутствием в эритроцитах антигенов А и В было определенно четыре группы: 0 (I) – не имеет ни антигена А, ни антигена В, А (II) – в эритроцитах находится только антиген А, В(III) – имеет только антиген В, АВ (IV) – наличие двух антигенов А и В (Daniels G.L. et al., 2004).
Групповые антигены эритроцитов выполняют различные функции: транспортную, рецепторную, структурную, регуляторную, активации комплимента, трофическую (Denomme G.A., 2004; Pruenster M. et al., 2009; Rochowiak A. et al., 2010).
Группа крови системы AB0 считается одним из основных иммуногенных барьеров, препятствующих трансплантации тканей от доноров в иммунокомпетентных хозяев (Galili U., 2006).
Известно, что группа крови в течение жизни человека не меняется, но под воздействием некоторых патологических процессов экспрессии эритроцитарных антигенов способна подавляться, вплоть до полного их исчезновения.
Самым изученным аспектом является связь системы АВO с фактором Виллебранда. Известно, что группы крови системы АВO оказывают значительное влияние на уровень фактора Виллебранда в плазме крови, являющегося носителем фактора свертывания крови VIII и обеспечивающего прикрепление тромбоцитов к участку поврежденного сосуда, тем самым регулируя гемостаз (Zhang H. et al., 2012; Tufano A. et al., 2013).
Высокий риск венозного тромбоза был зарегистрирован в группах крови А (II), В (III) и АВ (IV), что вероятно связано с активностью гликозилтрансфераз, катализирующих прикрепление к Н-антигену моносахаридных остатков. Уровень фактора Виллебранда у лиц этих групп крови был примерно на
25. выше, чем у лиц первой группы (Sari I. et al., 2008; Wu O. et al., 2008).
В 1940 г. К. Ландштейнер и И. Винер открыли наличие Rh-фактор. Система резус фактор содержит около
1. антигенов, самым важным является антиген D. Наличие или отсутствие данного антигена определяет принадлежность к резус-фактору (Rh-положительный или Rh-отрицательный).
86. европейцев имеют резус-фактор положительный. 100% монголов имеют резус-фактор положительный, а 100% аборигенов Австралии резус-фактор отрицательный.
В иммуногенетике животных представление о группах крови отличается. Антигены и антигенные системы групп крови животных многочисленны. Комплекс антигенов формирует десятки систем и сотни вариаций групп крови у животного одного вида. Кровь животных, независимо от ее групповой принадлежности, не совместима с кровью человека (исключение шимпанзе).
Каждая система крови животного обозначается заглавной буквой латинского алфавита – А, В, С. Антигены крови обозначают одной заглавной либо двумя – Е или Еа. Наследование антигенов контролируется несколькими генами. В эритроцитах содержится мало, либо отсутствуют естественные антитела. Присутствующие антитела имеют низкий титр. У домашних животных образование естественных антител связано с заболеваниями или вакцинацией (Дунин И.М. и соавторы, 1996).
Группы крови у животных определяют по антигенам эритроцитов присутствующих в организме (Хатт Ф.Б., 1969).
Большинство видов животных, кроме приматов, имеют антигены, схожие с антигенами системы АВO человека. Наиболее изучены домашние и сельскохозяйственные животные. В 1950– 60-х годах первое определение и исследование групп крови кошек (Clark C.H. et al., 1963; Lautie R. et al., 1969).
У кошек выявлены три группы крови – А, В и АВ, группа АВ – очень редкая и до конца не изучена (Leipoldt A.L., 2002).
Эта система не связана с системой групп крови человека и называется АВ. У кошек пока нет нулевой группы крови, где отсутствуют А и В антигены (Giger U. et al., 1991).
Распространена кровь группы А (74%), В группа варьирует, в зависимости от породы и места обитания от 3 до 50% (Hohenhaus A.E., 2004; Davidow B., 2013).
Группы крови кошек определяются антигенами, расположенными на поверхности мембраны эритроцитов, и особыми углеводами (как у человека).
N-гликольнейраминовая кислота определяет А- антиген и N-ацетилнейраминовая кислота – B-антиген. Ген B кодирует фермент, который преобразует N-гликольнейраминовую кислоту в N- ацетилнейраминовую (Andrews G.A. et al., 1992).
У собак две классификации систем крови, учитывая расхождение мнений авторов, сейчас равнозначно применяются обе классификации. Первая классификация-10 систем групп крови – DEA 1, DEA 3, DEA 5 и т.д. (табл. 1; Kessler R. et al., 2010).
Таблица 1
Системы групп крови собак
У некоторых антигенов выявлены естественные антитела (Polak K. et al., 2015).
Распространенной системой групп крови является DEA 1 и определяется тремя аллелями – DEA 1.1, 1.2, 1.3 (Acierno M.M. et al., 2014).
Антиген DEA 1.1, обладает сильными антигенными свойствами (Mesa-Sanchez I. et al., 2014).
DEA 1.1, 1.2, 1.3 и 1 null иногда объединяют в систему А, в некоторой степени аналогично резус-фактору у людей (Corato A. et al., 1997).
Вторая классификация содержит одиннадцать групп крови-А, В, С, D, Е и т.д. (Kirksey L. et al., 2002).
Распространена группы крови А (50% собак).
Антиген Аа обладает таким же значением, как и резус-фактор у людей, 60-65% животных содержат данный антиген (Symons M. et al., 1991).
Антигенные возможности и биологические свойства систем крови собак еще мало изучены.
Группы крови выявлены и у других животных и птиц: олени, верблюды, кролики, крысы, мыши, утки, голуби. Для животных характерно различие групп крови, но систематика групп крови животных не достигла такого уровня развития, как у человека. Исследователи продолжают открывать новые антигены и системы крови. Иммуногенетические особенности крови животных и человека обеспечивают совместимость с окружающей средой, а антигенный полиморфизм – уникальная антигенная неповторимость особи обеспечивает устойчивость вида в целом. Система антиген–антитело АВO относится к системам структурно-функционального обеспечения жизнедеятельности организма и, как любая система организма, подвержена влиянию внешних и внутренних факторов
Выдержка из текста
Введение
Актуальность проблемы. В наше время клиническая лабораторная диагностика для оценки различных параметров функционирующего организма обладает множественными методами исследования, количество которых постоянно увеличиваться.
Лабораторная диагностика образовалась на рубеже наук: химия, физика, биология, а также клинических дисциплин: клиническая медицина и ветеринарная медицина. Благодаря этому лабораторная диагностика все время совершенствуется, появляются новые методы исследования, которые помогают в правильной постановке сложных диагнозов и лечении таких пациентов.
Улучшение информативности лабораторных исследований на практике означает постоянное повышение качества методов, позволяющих повышать сведения о состоянии и резервных ресурсах организма, о работе жизненно важных органов и физиологических систем организма, высокой степени дис- функции процессов и характере их развития при появлении патологии.
Использование методов лабораторной диагностики, корректное назначение тестов исследования и их диагностическая ценность, а также понимание полученных результатов основана на знании всех жизненно важных процессов, происходящих на разных уровнях организации организма. Задачей клинической лабораторной диагностики является количественная и качественная оценка показателей клеток крови, а также их соотношение, определение физико-химических параметров, изучение системы свертывания крови и других свойств.
Профессиональная деятельность сотрудников клинической лабораторной диагностики ориентирована на объективное исследование биомаркеров лабораторными методами для получения данных о состоянии здоровья, о различных вариантах патологии и для коррекции лечебного процесса. При этом следует принимать во внимание то, что информативность данных находиться в единой взаимосвязи с использованием определенных методов и тех погрешностей, которые появляются из-за условий и времени взятия пробы, ее хранения, а также качественная и высококвалифицированная работа сотрудников и другие факторы. Однако безупречно произведенные исследования, способствующие получить верные и точные результаты, могут быть бесполезными до того момента, пока они не вовлечены в диагностический процесс в совокупности с определенным состоянием организма конкретного животного. Исключительно верное восприятие важности и значимости любого из этих множественных факторов позволит употребить результаты проведенного исследования разных биомаркеров в роли одной из частей объективной и многогранной картины жизнедеятельности организма.
Преждевременная проверка состояния пациента считается основой для актуальной профилактики и оперативного лечения обнаруженной патологии.
Также это способствует предупреждению летального исхода и поддержанию производительности животных. Важное значение имеет гематологическое, биохимическое и иммунологическое исследование для установления иммунной реактивности животных, а кроме того при анализе возникновения и прогнозирования производительности, жизнеспособности потомства.
Цель исследований:
Показать значимость лабораторной диагностики крови у млеко питающих (кошек, собак и человека) в оценке общего состояния организма и профилактике заболевания.
Задачи исследования :
Актуальность исследования групповой принадлежности у млекопитающих.
Выявить особенности переливания крови у животных.
Оценить диагностическое значение клинического анализа крови у млекопитающих.
Определить значение исследования системы гемостаза у млекопитающих.
Выявить роль биохимических показателей в диагностике патологий.
Список использованной литературы
Список литературы.
Бернард Ф. Фелдман. Рекомендации по переливанию крови. // Современный курс ветеринарной медицины Кирка. – Аквариум, 2005г; стр. 461-465
Биткова Е.Е., Зверева Н.Ю., Хватов В.Б., Чумаков М. В., Тимербаев В. Х., Дублев А.В., Редкобородый А.В. Коагуляционный профиль пациентов в конце кардиохирургической операции // Анестезиология и реаниматология. 2014; 1:14-17.
Бокерия Л.А., Гудкова Р.Г. Сердечно-сосудистая хирургия – 2015. Болезни и врожденные аномалии системы кровообращения. М.: НЦССХ им. А.Н. Бакулева, 2016. 208с. 19.
Галяутдинов Г.С., Чудакова Е.А. Особенности системы гемостаза у пациентов с ишемической болезнью сердца // Казанский медицинский журнал. 2012; 93(1): 3-7.
Инструкция по медицинскому применению препарата Варфарин Реги-страционный номер: ЛСР-006276/09. URL: http://www.canonpharma.ru/ru/ drugs/cardiology/varfarin
Каменев В.Ф., Стрельникова И.Л., Масленников А.А. Сравнительная оценка показателей коагуляционного гемостаза в артериальной и венозной крови у пациентов с хронической сердечной недостаточностью различного генеза // Научные ведомости. Серия Медицина. Фармация. 2012; 4 (123): 81-84. Ланг Т.А., Сесик М. Как описывать статистику в медицине: Руководство для авторов, редакторов, рецензентов. М.: Практическая медицина; 2011.480с. 70.
Козловская Н.Г. Гемотрансфузия. // Болезни собак: Сравочник // Со- ставитель Майоров А.И. – М.: Колос, 2001г. – стр. 87-88.
Козловская Н.Г. Показания для гемотрансфузии. // Доклад на VII Все- российской ветеринарной конференции по анестезиологии, реанимато- логии и интенсивной терапии. Москва, 29 –
3. ноября 2011г.
Кузник Б.И. Клеточные и молекулярные механизмы регуляции систе- мы гемостаза в норме и патологии: монография. Чита: Экспресс-изда- тельство; 2010. 832с. 191.
Лакин Г.Ф. Биометрия: учеб.пособие для биол. вузов/ Лакин Г.Ф. —М.: Высш. шк., 1990. — С. 85— 91, 148.
Марино Пол Л. Принципы трансфузионной терапии. // Интенсивная терапия; пер. с англ. под общ. ред. Зильбера А.П. – М.: ГЭОТАР – Медиа,2010г. стр. 227-237.
Мухамедова У.М., Карпенко М.А., Солнцев В.Н. Свертывающая система крови и объем кровопотери при коронарном шунтировании у больных ишемической болезнью сердца и артериальной гипертензией с различной чувствительностью к аспирину // Артериальная гипертензия. 2011; 17(5): 474-477.
Никифоров Ю.В., Чернышева Г.Г., Молчанова Л.В., Евдокимов М.Е. Особенности системы гемостаза у больных с острым коронарным синдромом и хронической ишемической болезнью сердца в периоперацион- ном периоде // Общая реаниматология. 2007; 4: 15-21.
Номоконова Е.А., Елыкомов В.А., Ефремушкина А.А., Ананьев Д.А. Параметры системы гемостаза у пациентов с хронической ишемической болезнью сердца до и после коронарного шунтирования // Медицинский альманах. 2016; 2 (42): 31-34.
Островский А.Г., Карашуров Е.С. Переливание крови, препаратов крови и кровозаменителей. – Петразоводск: Из-во Петр Гу. 2000г. стр. 5-10.
Пак Н.Л., Голухова Е.З., Самсонова Н.Н., Мерзляков В.Ю., Климович Л.Г., Рябинина М.Н., Кубова М.Ч. Состояние системы гемостаза у больных ишемической болезнью сердца после операции реваскуляризации миокарда, выполненной в условиях искусственного кровообращения и на работающем сердце // Креативная кардиология. 2011; 2:60-70.
Прасолов Н.В., Шулутко Е.М., Буланов А.Ю., Яцков К.В., Щербакова О.В. Экстренная терапия кровотечений у пациентов, принимающих варфарин // Анестезиология и реаниматология. 2015; 60(2): 72-76.
Риган В. Дж., Сандерс Т. Г., Деникола Д. Б. Атлас ветеринарной гематологии. М. : Аквариум-Принт, 2014. 135 с.
Тихонов, В.Н. Генетические системы групп крови животных/В.Н. Ти- хонов.– Новосибирск: Наука, 1965. – 115 с.
Тюняев, А.А. Группы крови – вирусно-генетическое заболевание человека, обезьян и других животных /А.А. Тюняев //Вестник новых медицинских технологий. – 2011. – Т. ХVIII. – No 1. – С. 180– 182
Джиджер Урс. Определение группы крови и перекрёстные пробы на совместимость для проведения переливаний крови. // Современный курс ветеринарной медицины Кирка. – Аквариум, 2005г; стр. 457-461.
Усевич В. М., Дрозд М. Н. Учебное пособие. Практикум по лабора- торной диагностике. Часть
1. Исследование крови. Екатеринбург : Ур- ГАУ, 2014. 80 с
Хатт Ф. Б., Генетикаживотных, пер. с англ., М., 1969
Энциклопедия клинических лабораторных тестов/Под ред. Н. Тица. М.: Династия, 2007
Acierno, M.M. DEA 1 expression on dog erythrocytes analyzed by immunochromatographic and flow cytometric techniques /M.M. Acierno, K. Raj, U. Giger // J. Vet. Intern. Med. – 2014. –V. 28(2).
– P. 592– 8.
Alshaikh N.A., Rosing J., Thomassen M.C.L.G.D., Castoldi E., Simioni P., Hackeng T.M.. New functional assays to selectively quantify the activated protein C — and tissue factor pathway inhibitor-cofactor activities of protein S in plasma // Journal of Thrombosis and Haemostasis. 2017; 15: 950-960. DOI: 10.1111/jth.13657.
Andrews, G.A. N-glycolylneuraminic acid and N acetylneuraminic acid define feline blood group A and B antigens / G.A. Andrews, P.S. Chavey, J.E. Smith, et al. // Blood. – 1992. – V. 79. – P. 2485– 2491
Briles W.E. Induced hemolytic disease in chicks/ Briles W.E.//Genetics. – 1948. – V. 33. – P. 96.
Butterwick RF, McConnell M, et al. Influence of age and sex on plasma lipid and lipoprotein concentrations and associated enzyme activities in cats. Am J Vet Res 62:331-336, 2001.
Charles T. Esmon. Protein C anticoagulant system — antiinflammatory effects // Semin Immunopathol. 2012; 34: 127-132. DOI 10.1007/s 00281-011-0284-6.
Clark, C.H. Longevity of red blood cells in interspecies transfusion /C.H. Clark, G.K. Kiesel //J. Am. Vet. Med. Assoc. – 1963. –V. 143. – P. 400– 401.
Daniels, G.L. Blood group terminology 2004: from the International Society of Blood Transfusion committee on terminology for red cell surface anti- gens / G.L. Daniels, A. Fletcher, G. Garratty, S. Henry //International Society of Blood Transfusion. – 2004. –V. 87(4).
– P. 304– 316.
Center SA, Randolph JF, et al. Effect of colostrum ingestion on gamma glutamyl transferase and alkaline phosphatase activities in neonatal pups. Am J Vet Res 52:499-504, 1991.
Chabanne L. I gruppi sanguigni deicarnivori domestici: Trasfusioni e malattie emolitiche neonatali/ Chabanne L. [et al.]// Summa. — 1994. – V. 11. – P. 5-17.
Corato, A. Biochemical characterization of canine blood group antigens (Immunoprecipitation of DEA 1.2, 4, and 7 and identification of a dog ery- throcyte membrane antigen homologous to human Rhesus) /A. Corato, G. Mazza, A.S. Hale et al. // Vet. Immunol. Immunopathol. – 1997. –V. 59. – P. 213– 223.
Concordet D, Vergez F, Trumel C, et al. A multicentric retrospective study of serum/plasma urea and creatinine concentrations in dogs using univariate and multivariate decision ruled to evaluate diagnostic efficacy. Vet Clin Pathol. 2008; 37:96– 103.
Cotter S. M. Comparative transfusion medicine: Advances in Veterinary Science and Comparative Medicine/ Cotter S. M. — San Diego, Academic Press, 1991. — P. 343.
Denomme, G.A. The structure and function of the molecules that carry human red blood cell and platelet antigens /G.A. Denomme //Transfus. Med. Rev. – 2004. – V. 18(3).
– P. 203– 31.
Dunlop MM, Sanchez-Vazquez MJ, Freeman KP, Gibson G, Sacchini F,Lewis F. Determination of serum biochemistry reference intervals in a large sample of adult greyhounds. J Small Anim Pract.
Fisher D., Rossa S., Landmesser U. et al. Endothelial dysfunction in patients with chronic heart failure is incidence of hospitalization, cardiac trans- plantation, or death // Eur. Heart J. 2005; 26(1): 65– 69.
Fukuda Y., Kuroiwa Y., Okumiya K., Kuroiwa N., Ohshige T., Tabuchi H., et al. Hypercoagulability in patients with mitral stenosis — from the viewpoint of the behavior of plasma antithrombin III and alpha 2-plasmin inhibitor // Jpn Circ J. 1980; 44(11): 867-874.
Galili, U. Xenotransplantation and ABO incompatible transplantation: the similarities they share /U. Galili //Transfus. Apher. Sci. – 2006. – V. 35. – P.
Giger, U. Frequencies and inheritance of A and B blood types in feline breeds of the United Statesм /U. Giger, J. Buchrler, D. Patterson //Journal of Heredity. – 1991. –V. 82. – P. 15– 20.
Harper EJ, Hackett RM, Wilkinson J, et al. Age-related variations in hematologic and plasma biochemical test results in Beagles and Labrador Retrievers. J Am Vet Med Assoc 2003; 223.
Healy L.D., Puy C., Fernández J.A., Mitrugno A., Keshari R.S., Taku N.A., Chu T.T., Xu X., Gruber A., Lupu F., Griffin J.H., Mc Carty O.J.T. Ac- tivated protein C inhibits neutrophil extracellular trap formation in vitro and activation in vivo // J Biol Chem. 2017 Apr 13. jbc. M116. 768309. DOI: 10.1074/jbc.M116.768309.
Hohenhaus, A.E. Importance of Blood Groups and Blood Group Antibod- ies in Companion Animals /A.E. Hohenhaus //Transfusion Medicine Reviews.– 2004.– V. 18(2).
– P. 117– 126.
Hohenhaus A. E. Transfusion medicine: Problems in Veterinary Medicine/ Hohenhaus A. E. — Philadelphia, 1992. — P. 670.
Kaempffer A. Die Blutgruppeneigenschaften der Pferde und ihre Vererbung/ Kaempffer A.// Z. Züchtung, 1935. – Bd. 32. – S. 169-198.
Kessler, R. Dog erythrocyte antigens 1.1, 1.2, 3, 4, 7 and Dal blood typing and cross-matching by gel column technigue /R. Kessler, J. Resse et al. //Vet. Clin. Pathol. – 2010. – V. 39(3).
– P. 306– 316.
Kirksey, L. Prophylactic antibiotics prior to bacteremia decrease endovas- cular graft infection in dogs /L. Kirksey, B.J. Brener, S. Hertz, V. Parsonnet et al. // Endovascular Surg. – 2002. – V. 36(3).
– P. 171– 8.
Kristensen A. T. Blood banking and transfusion medicine: Textbook of Veterinary Internal Medicine. Diseases of the Dog and Cat./ Kristensen A. T., Feldman B. F. — Philadelphia, 1955. — P. 347-360.
Lautie, R. Blood hetero-transfusion in the cat. Immunological and clinical study / R.Lautie, J.Coulon, Geral, M.F.Cazieux et al. //Rev. Med. Vet. – 1969.– V. 120. – P. 311– 323.
Leipoldt,A.L. The blood group of cats /A.L. Leipoldt //International Cat Federation Judges. – 2002. –V. 3(1).
– P. 92– 93.
Lipinski MJ, Froenicke L, Baysac KC, et al. The ascent of cat breeds: Ge- netic evaluations of breed and worldwide randombreed populations. Ge- nomics 2008; 91:12– 21.
Lip G.Y.H., Ponikowski P., Andreotti F. et al. Thromboembolism and antithrombotic therapy for heart failure in sinus rhythm. A joint consensus document from the ESC Heart Failure Association and the ESC Working Group on Thrombosis // Eur. J. Heart. Fail. 2012; 14(7): 681-695.
Logdberg, L. Human blood group genes 2010: Chromosomal locations and cloning strategies revisited /L. Lоgdberg, M.E. Reid, T. Zelinski //Transfus.Med. Rev. – 2011. – V. 25. – P. 36– 46
McCann TM, Simpson KE, Shaw DJ, et al. Feline diabetes mellitus in the UK: The prevalence within an insured cat population and a questionnaire- based putative risk factor analysis. J Feline Med Surg 2007; 9:288– 299.
Mesa-Sanchez, I. Prevalence of dog erythrocyte antigen 1.1 in galgos (Spanish greyhounds) /I. Mesa-Sanchez, R. Ruiz de Gopegui-Fernández,
M.M. Granados- Machuca, A. Galan-Rodriguez //Vet. Rec. – 2014. – V. 5; 174(14).
– P. 351.
Mukherjee S., Jagadeeshaprasad M. G., Banerjee T., Ghosh S. K., Biswas M., Dutta S., Bandyopadhyay, A. Proteomic analysis of human plasma in chronic rheumatic mitral stenosis reveals proteins involved in the complement and coagulation cascade // Clinical proteomics. 2014; 11(1): 35-53.
Murad A.A., Daly T., Mulligan N., Lenane P. Extensive warfarin-induced skin necrosis successfully treated with negative pressure wound therapy // BMJ case reports. 2014: bcr 2013203510. DOI:10.1136/bcr-2013-203510.
Pruenster, M. The Duffy antigen receptor for chemokines transports chemokines and supports their promigratory activity /M. Pruenster, L. Mudde,
P. Bombosi, S. Dimitrova et al. //Nat. Immunol. – 2009. – V. 10(1).
– P. 101– 8.
Polak, K. Dog erythrocyte antigen 1: mode of inheritance and initial characterization /K. Polak, M.M. Acierno, K. Raj, K. Mizukami et al. //Vet. Clin. Pathol. – 2015. – V. 44(3).
– P. 369– 79.
Reusch C, Hoerauf A, Lechner J, et al. A new familial glomerulonephropathy in Bernese mountain dogs. Vet Rec. 1994;134:411– 415.
Rochowiak, A. The role of CR1 complement receptor in pathology / A. Rochowiak, Z.I. Niemir //Pol. Merkur. Lekarski. – 2010. – V. 28(163).
– P. 84– 8.
Sari, Y. Role of the serotonergic system in alcohol dependence: from animal models to clinics /Y. Sari, V.R. Johnson, J.M. Weedman //Prog. Mol. Biol. Transl. Sci. – 2011. – V. 98. – P. 401– 43. Tufano, A. Non-O blood group as a risk factor for cerebral vein thrombosis / A. Tufano, A. Coppola, A. Nardo, C. Bonfanti et al. //Thromb. Haemost. – 2013. – V. 110. – P. 197– 9.
Symons, M. Expansion of the canine A blood group system / M. Symons, K. Bell //Anim. Genet. – 1991. – V. 22(3).
– P. 227– 35.
Wu, O. AB0 (H) blood groups and vascular disease: a systematic review and meta-analysis /O. Wu, N. Bayoumi, M.A. Vickers, P. Clark //Journal of Thrombosis and Haemostasis. – 2008. – V. 6(1).
– P. 62– 69.
Zhang, H. ABO Blood Groups and Cardiovascular Diseases /H. Zhang, C.J. Mooney, M.P. Reilly //Int. J. Vasc. Med. – 2012. – 641917 [electronic resource]
