Пример готовой курсовой работы по предмету: Химия
Содержание
Введение 4
1 Аналитический обзор 6
1.1 Типы генетических маркеров 6
1.2 Современное состояние репродуктивного здоровья крупного рогатого скота 10
1.3 Генетические маркеры мужской фертильности 13
1.4 Генетические маркеры женской фертильности 19
2 Методы исследования 24
2.1 Общий обзор методов 24
2.2 Метод ПЦР-ПДРФ анализа в детекции маркеров репродуктивного здоровья 32
Заключение 35
Библиографический список 37
Выдержка из текста
В течение многих лет селекция крупного рогатого скота велась в двух основных направлениях – улучшение продуктивности молочных пород животных и улучшение продуктивности мясного скотоводства. Традиционная селекция велась по фенотипическим признакам, таким как качественные показатели молока (жирность, удой, содержание белков).
Однако при оценке коров молочных и мясных пород большое значение имеет не только высокий уровень молочной и мясной продуктивности, но и признаки репродуктивного здоровья крупного рогатого скота. Известно, что отбор на молочную продуктивность привел к снижению фертильности крупного рогатого скота и повышению уровня абортов, снижению качества спермы.Традиционная селекция по репродуктивным признакам малоэффективна вследствие того, что фертильность в большой степени зависит от условий среды и обладает низким коэффициентом наследуемости. В связи с этим развиваются новые методы селекции в животноводстве.
Активное развитие методов молекулярной генетики и генодиагностики позволяют определять гены и локусы, контролирующие или ассоциированные с полезными хозяйственно-значимыми признаками. Все большее распространение получают методы генодиагностики при установлении родословной животных, с целью активного влияния на селекцию необходимых признаков. Селекция на уровне генотипа (маркер-зависимая селекция) имеет ряд существенных преимуществ перед традиционной селекцией по фенотипам. Во-первых, маркер-зависимая селекция не учитывает изменчивость, обусловленную случайными средовыми факторами и делает возможной селекцию на ранних этапах развития организма. Селекция по генотипу может вестись по признакам, которые ограничены полом. Все это в целом повышает эффективность и скорость селекции. От одной коровы можно получить в лучшем случае одного теленка в год, в то время, как в её яичнике содержатся сотни тысяч незрелых половых клеток (ооцитов), представляющих огромный генетический резерв. Кардинальное решение проблемы ускоренного воспроизводства скота состоит в том, чтобы перейти к нетрадиционным способам увеличения плодовитости. Для этого применяется целый ряд биотехнических методов, разработанных на основе углубленных исследований репродуктивной функции, её регуляции, а также на совершенствование приемов манипуляции с эмбрионами, половыми и соматическими клетками. В перспективе биотехнология рассматривается как основа ускоренного воспроизводства высокопродуктивных животных и целых популяций.
Целью данной работы является обзор генетических маркеров репродуктивного здоровья крупного рогатого скота. Для достижения поставленной цели были сформулированы следующие задачи: 1) рассмотреть различные типы генетических маркеров, которые могут использоваться в животноводстве; 2) сделать обзор современного состояния репродуктивного здоровья крупного рогатого скота;
3. выявить молекулярно-генетические маркеры женской и мужской фертильности; 4) сделать обзор методов диагностики полиморфизма генетических маркеров.
Список использованной литературы
Зиновьева Н.А., Кленовицкий П.М., Гладырь Е.А., Никишов А.А. Современные методы генетического контроля селекционных процессов исертификация племенного материала в животноводстве. М., 2008. 329 с.
2. Состояниевсемирныхгенетическихресурсовживотныхвсферепродовольствияисельскогохозяйства // Доклад ФАО.М., 2010. 52 с.
3. AssociationanalysisbetweenvariantsinbovineprogesteronereceptorgeneandsuperovulationtraitsinChineseHolsteincows / W. C. Yang [et al.]
//Reprod. Dom. Anim. 2011. № 46. P. 1029-1034.
4. Association between IGF-IR gene polymorphisms and productive and reproductive traits in Holstein cows / W. Schoenau[et al.]
// Aq. Bras. Med. Vet. Zootec. 2005. № 57. P. 772-776.
5. Blood COX-2 and PGES gene transcription during the peripartum period of dairy cows with normal puerperium or with uterine infection /E.Silva [et al.]
// Domest. Anim. Endocrinol. 2008. № 35. P. 314-323.
6. Candidate gene markers for sperm quality and fertility in bulls /C. Mishra [et al.]
// Veterinary World.2013. № 6(11).
Р. 905-910.
7. Cinar M.U., Tsujii H., Schellander K. Intracellular signaling cascades induced by relaxin in the stimulation capacitation and acrosome reaction in fresh and frozen-thawed bovine spermatozoa. // Animal Reproduction Science. 2011. № 125(1-4).
Р.30-41.
8. Effects of novel single nucleotide polymorphisms of the FSH beta-subunit gene on semen quality and fertility in bulls / L.S. Dai [et al.]// Animal Reproduction Science. 2009. № 114. Р.14-22.
9. Expression of prolactin-related protein 1 at the fetomaternal interface during the implantation period in cows / O.Yamada [et al.]
// Reproduction. 2002. № 124. Р. 427-437.
10. Geizert R.D., Yelich J.V. Regulation of conceptus development and attachment in pigs// J. Reprod. Fertil. 1997. Suppl. 52. P. 133-149.
11. Glycolysis and mitochondrial respiration inmouse LDHC-null sperm / F. Odet [et al.]// Biology of Reproduction. 2013. № 88(4).
Р.95-95.
12. Kirkpatrick B.W., Byla B.M., Gregory K.E. Mapping quantitative trait loci for bovine ovulation rate // Mammalian Genome. 2000. № 11. P. 136-139.
13. Mahmoud K.G.M., Nawito M.F. Molecular markers for fertility in farm animals // Iranian journal of applied animal science. 2012. № 2(3).
Р. 203-222.
14. Mannaertz B., Uilenbrock J., Schot P., De Leeuw R. Folliculogenesis in hypophysectomized rats after treatment with recombinant human follicle stimulating hormone // Biol. Reprod. 1994. № 51. Р.72-81.
15. Molecular characterization and expression profile of uterine serpin (SERPINA14) during different reproductive phases in water buffalo (Bubalus bubalis) / S. Kandasamy [et al.]
// Anim. Reprod. Sci. 2010. № 122. Р. 133-141.
16. Monget P., BondyC. Importance of the IGF system in early folliculogenesis // Mol. Cell. Endorcrinol. 2000. № 163. Р. 89-93.
17. Moura A.A., Kos H., Chapman D.A., Killian G.A. Identification of proteins in the accessory sex gland fluid associated with fertility indexes of dairy bulls: a proteomic approach // Journal of Andrology. 2006. № 27.Р. 201-211.
18. Pan, Q. PLCz functional haplotypes modulat ing promoter transcriptional activity are associated with semen quality traits in Chinese Holstein bulls. // PLoS ONE. 2000. № 8(3).
e 58795.
19. Sato H. Group III secreted phospholipase A2 regulates epididymal sperm maturation and fertility in mice // Journal of Clinical Investigation. 2010.№ 120. Р. 1400-1414.
20. Six novel SNP in SPAG11 gene and their association with sperm quality traits in Chinese Holstein bulls / X. Liu[et al.]
// Animal reproduction science. 2011. № 129. Р. 14-21.
21. Stormshak F., Bishop C.V. Estrogen and progesterone signaling: Genomic and nongenomic actions in domestic ruminants. // Journal of Animal Science. 2008. № 86. P. 299-315.
22. The steroid receptor coactivator SRC-3 (p/CIP/RAC3/AIB1/ACTR/TRAM-1) is required for normal growth, puberty, female reproductive function, and mammary gland development/ J.Xu[et al.]
// Proc. Natl. Acad. Sci. 2000. № 97. Р. 6379-6384.
23. Two novel missense mutations in 9 protein- coupled receptor 54 in a patient with hypogonadotropic hypogonadism /R.K. Semple[et al.]
// J. Clin. Endocrinol. Metab. 2005. № 90. P. 1849-1855.
24. Zygote arrest 1 (Zar 1) is a novel maternaleffect gene critical for the oocyte-to-embryo transition/ X. Wu[etal.]// Nat. Genet. 2003. № 33. P. 187-191.
